A hysteroszkópia módszerei

Gáz Hysteroscopy

Expansion medium

A gáz hysteroscopiával a méh üregének kibővítésére széndioxidot alkalmaznak. Az első alkalommal a használatát CO ₂ alatt hiszteroszkópiát ki Rubin 1925 a gázellátást a méh üregébe használatával gisteroflyator. A diagnosztikai hiszteroszkópia elvégzése során a méh üregében elegendő nyomás 40-50 mmHg, és a gázáram több mint 50-60 ml / perc. A legfontosabb mutató a gázáramlási sebesség. Ha 50-60 ml / perc sebességgel adagolják a gázt, még a vénába való belépés sem veszélyes, mivel a szén-dioxid könnyen feloldódik a vérben. Amikor a betáplálási sebessége a CO ₂ több mint 400 ml / perc acidózis, azonban nyilvánvaló, toxikus hatásainak a CO ₂ formájában kardiális diszfunkció, és térsebességgel 1000 ml / perc elhalálozás (Lindemann és munkatársai, 1976 ;. Vitéz, 1983). Több mint 100 mm Hg nyomáson. és 100 ml / perc-nél nagyobb CO ₂ -adagolási sebességet írtak le, gázembóliás eseteket írtak le. Ezért a laparoszkópos insufflator vagy bármely más, nem hysteroszkópiára tervezett eszköz elfogadhatatlan a méh üregébe történő gázszállítás esetén. Ez vezethet nagy mennyiségű gáz ellenőrizetlen adagolásához és a fenti komplikációkhoz vezethet.

A diagnosztikai hiszteroszkópia általában több percig tart, és a hasi üregbe belépő kis mennyiségű gáz rendszerint gyorsan felszívódik anélkül, hogy komplikációkat okozna. Néha a petevezetékek jó átjárhatóságával a gáz behatol a hasüregbe, és a jobb vállban enyhe fájdalmat okozhat, amelyek egy idő után öngyógyulnak. A gáz-hiszteroszkópia könnyen elvégezhető és nagyon jól áttekinthetővé teszi a méh üregét, különösen a posztmenopauzás nőknél és a menstruációs ciklus proliferatív fázisában. A méh üregében lévő vér jelenléte esetén a CO ₂ olyan vezikulumok képződését okozza, amelyek korlátozzák a látást. Ebben a helyzetben folyadékhieroszkópiára való áttérés szükséges.

A CO ₂ nem támogatja az égést, így biztonságosan alkalmazható az elektroszkópos sebészetben, ugyanúgy, mint a méhcsövek koagulációjával történő hysteroszkópos sterilizálás bevezetésekor.

De a hosszú távú műveletek során a szén-dioxid elfogadhatatlan, mivel nem biztosít megfelelő feltételeket a petevezetékek, a nyaki csatorna és a működési csatorna jelentős szivárgása miatt.

Ezen kívül, a gáz hiszteroszkópia kívánatos elvégezni nyaki törzs, amikor lehetetlen, hogy elegendő lezáró és a teljes körű kiterjesztése a méh, és amikor megpróbálja használni méhnyakbevonatok adapter fennáll a veszélye a nyaki sérülés. Upon csírázási myometrium rákos nyaki hermetikus lezárás adapter elősegítheti szakadás a méh test még alacsony gáznyomás.

A gáz embólia lehetséges kockázatának köszönhetően a méh üregének megkötésére a CO ₂ nem használható. A gáz histeroszkópia hátrányait a CO ₂ megszerzésének nehézsége is tulajdoníthatja .

A szén-dioxid alkalmazása tanácsos a diagnosztikai hiszteroszkópia és a véres ürítés hiányában.

Így a gáz hiszteroszkópiának a következő hátrányai vannak:

1. A műtéti beavatkozások lehetetlensége a méh üregében.
2. A hysteroszkópos méhvérzés nem lehetséges.
3. A gázembólia veszélye.
4. Expensiveness.

felszerelés

A gáz hysteroszkópia elvégzésénél jobb, ha nem növeli a nyaki csatornát, de ha szükséges, a Gegar dilatátorokat a 6-7. Számig behelyezzük a cervicalis csatornába.

A méhnyak méretétől függően a megfelelő méretű sapka-adapter kerül kiválasztásra. A csatorna adapter bejuttatott expandernek Gegara № 6-7, amelyen keresztül (eltávolítása után lövedék csipeszek cervikális) egy sapkát fektetni a méhnyak és a rögzített rajta létrehozásával negatív nyomás a kupakot egy speciális fecskendő vagy vákuumos szívó.

Miután eltávolította a bővítőt az adaptercsíkból, egy hysteroszkóp testet helyezünk a méh üregébe optikai cső nélkül. A test csatornáján keresztül 40-50 ml izotóniás nátrium-klorid-oldatot (a méh üregének a vérből történő mosásához) injektálnak a méh üregébe, majd az oldatot szívó segítségével eltávolítják.

Az optikai cső a hiszteroszkóp optikai csőjéhez csatlakozik, az optika a hiszteroszkóp testéhez van erősítve. A test egyik szelepéhez egy csövet csatlakoztatnak, hogy 50-60 ml / perc sebességgel a hysterofilátorból kivonják a CO ₂ -ot, és a méh üregében a nyomás ne haladja meg a 40-50 mmHg értéket.

Folyékony hereroszkópia

Expansion medium

A legtöbb sebész a folyadékhisztoszkópiát preferálja. A kellő tisztaságú láthatóság mellett a folyadék-hiszterszkópia megkönnyíti a hysteroszkóp működésének szabályozását.

A folyadék bizonyos mértékig a méh üregébe kerül. Nagyon alacsony nyomás rontja a felülvizsgálatot, nem teszi lehetővé a méh üregének megfelelő kiterjesztését és a tampon sérült hajókat. A túl magas nyomás kiváló látást biztosít, de a folyadék nyomás alatt lép be a keringési rendszerbe, jelentős folyadékterhelés és anyagcsere zavarok kockázatával. Ezért kívánatos a méh üregében a nyomás 40-100 mmHg-ig történő szabályozása. A méhen belüli nyomás mérése kívánatos, de nem szükséges.

A kiáramlás csapja vagy a megnagyobbodott nyaki csatornán keresztül folyó folyadék szükséges a térfogat összegyűjtéséhez és folyamatos méréséhez. A folyadékveszteség nem haladhatja meg az 1500 ml-t. A diagnosztikus hiszteroszkópia során ezek a veszteségek általában nem haladják meg a 100-150 ml-t, kis műveletek esetén 500 ml. Amikor perforáció a méh azonnal meredeken növekszik folyadékveszteség, megszűnik elfolyását keresztül a csap vagy a méhnyak, maradék a hasüregben.

A méh üregének kitágulására nagy és kis molekulatömegű folyadékok vannak.

Nagy molekulatömegű táptalaj: 32% dextrán (giscon) és 70% dextróz. Támogatják a méh üregének szükséges nyújtását, nem keverik össze a vérrel, és jó áttekintést nyújtanak. A fecskendő bejutása a méh üregébe, akár 10-20 ml ilyen oldat is elegendő ahhoz, hogy tiszta képet biztosítson. De a nagy molekuláris megoldások meglehetősen drágák és nagyon viszkózusak, ami nehézséget okoz a munka során. A szerszámok gondos tisztítása és öblítése szükséges ahhoz, hogy elkerüljük a daruk elzáródását a folyadék beszivárgásához és leengedéséhez, amikor ezek az oldatok megszáradnak. Ezen média legjelentősebb hátránya az anafilaxiás reakció és a koagulopathia lehetősége. Ha hysteroscopia késik, dextrán lehet bejutni a hasüreget és a véráramba kerül, mint eredményeként a hyperosmolaris tulajdonságok oka, hogy túlterheli, ami ahhoz vezethet, hogy a tüdővizenyő vagy DIC. Cleary et al. (1985) tanulmányaiban kimutatták, hogy minden 100 ml nagy molekulasúlyú dextrán, amely belép az érrendszerbe, a keringő vér térfogata 800 ml-rel növekszik. Ezenkívül ezeknek a megoldásoknak az abszorpciója a hasüregből lassan megy végbe, és csak a 3-4. Napig éri el csúcspontját.

Mindezen hátrányok fényében a nagy molekulatömegű folyékony közegeket jelenleg rendkívül ritkán alkalmazzák, és egyes országokban (például az Egyesült Királyságban) tilos hysteroszkópiában használni.

Kis molekulájú oldatok: desztillált víz, sóoldat, Ringer és Hartmann oldatok, 1,5% glicinoldat, 3 és 5% szorbitoldat, 5% glükózoldat, mannit. Ezek a legfontosabb, a modern hieroszkópiában alkalmazott médiumok.

1. A desztillált víz használható diagnosztikai és sebészeti hiszteroszkópiához, rövid manipulációkhoz és műveletekhez. Fontos tudni, hogy ha több mint 500 ml desztillált víz felszívódik az érrendszeri ágyba, megnő az intravaszkuláris hemolízis, hemoglobinuria és következésképpen a veseelégtelenség kockázata.
2. Fiziológiai sóoldat, Ringer és Hartmann megoldások - elérhető és olcsó környezetben. Ezek a folyadékok izotóniásak a vérplazmával, és könnyen eltávolíthatók az érrendszerből, anélkül, hogy komoly problémákat okoznának. Izotóniás oldatok sikeresen használják során hysteroscopia méhvérzés a háttérben, mivel azok könnyen feloldottunk vérben eluáljuk a méh levágni a vér és a szövet töredékek, megfelelő láthatóságot. Ezek az elektroszkópos sebek az elektromos vezetőképesség miatt elfogadhatatlanok, csak diagnosztikai hiszteroszkópiára, mechanikus szövetszélesítésre és lézeres műtétre ajánlottak.
3. Elektrosebészeti műveletekhez glicin, szorbit és mannit nem elektrolit oldatait használják. Elfogadható az 5% -os glükózoldat, a reopolyglükin és a poliglicin alkalmazása. Ezek meglehetősen olcsóak és megfizethetőek, de használatukkor a befecskendezett és visszavont folyadék mennyiségének gondos megfigyelésére van szükség. A különbség nem haladhatja meg az 1500-2000 ml-t, hogy elkerülje a keringő vér térfogatának jelentős növekedését, ami elektrolit rendellenességeket, tüdőödémát és agyat eredményez.
   • A glicin az aminosav-glicin 1,5% -os oldata, amelynek első használatát 1948-ban írta le (Nesbit és Glickman). Felszívódás esetén a glicin metabolizálódik és kiválasztódik a vesék és a máj között. Ezért a glicint óvatosan adják be máj- és veseelégtelenség esetén. A hígítás hyponatriémia eseteit a prosztata és a méhen belüli resektoszkópia transzurethralis rezekciójában leírták.
   • 5% szorbit, 5% glükóz - izotóniás oldat, könnyen összekeverhető a vérrel, viszonylag jól látható, gyorsan eltávolítható a szervezetből. Ha ezeknek a megoldásoknak nagy száma bejut az érrendszeri ágyba, a hyponatraemia és a posztoperatív hiperglikémia lehetséges.
   • Mannitol - erős diuretikus hatású hipertóniás oldat, elsősorban a nátriumot és nagyon kevés káliumot távolítja el. Ennek eredményeként a mannit jelentős elektrolit zavarokat és tüdőödémát okozhat.

Tehát a méhüreg kiterjesztésére használt folyékony közegnek a következő hátrányai vannak:

• A látószög csökkentése 30 ° -kal.
• A fertőző szövődmények fokozott veszélye.
• Az anafilaxiás sokk, tüdőödéma, koagulopátia kockázata nagy molekulatömegű oldatok alkalmazásakor.
• Az érrendszeri ágy túlterhelése az összes következményével.

felszerelés

Folyékony histeroszkópiával történő ellátása során különféle mechanikai eszközöket használnak folyadékellátás céljából, kívánatos, hogy a nyaki csatornát maximálisan ki tudják terjeszteni a folyadék jobb kiáramlása érdekében (Gegar-dilatátorok a 11-12. Számra).

Ha állandó, folyadék-leadású és működési hiszteroszkóppal (folyamatos áramlás) rendelkező rendszert használ, ajánlatos a nyaki csatornát a 9-9.5-ös számra kiterjeszteni.

A teleszkópot a hiszteroszkóp testébe helyezték és rögzítő zárral rögzítették. A hiszteroszkóphoz csatlakoztasson egy rugalmas fényvezetőt egy fényforrással, egy vezetéket, amely összeköti a készüléket a méh üregének terjesztésével és egy videokamerával. Bevezetése előtt a hiszteroszkóp a méhbe ellenőrizze a hálózati közeg célja, hogy bővítse a méh üregében tartalmazza a fényforrást, és amelynek középpontjában a kamera.

A hiszteroszkóp be van helyezve a cervikális csatornába, és a látásszabályozás alatt fokozatosan fejlett a belsejében. Várakoznak a méh üreg megfelelő kiterjedéséhez szükséges időre. Azok a tájékozódások, amelyek biztosítják, hogy a hiszteroszkóp az üregben helyezkedjen el, szolgálja a petevezeték petejeit. Ha a vizsgálatot gázbuborékok vagy vér által gátolják, várjon egy kicsit, amíg a szivárgó folyadék ki nem veszik.

Először is, jobb, ha bevezetünk egy hiszteroszkópot félig nyitott csaptal folyadék beáramlására és egy teljesen nyitott csapot a kiáramlásra. Szükség esetén ezek a szelepek részben zárva vagy teljesen kinyithatók, hogy szabályozzák a méh üregének kiterjedését és javítsák a láthatóságot.

Óvatosan körültekintően vizsgálja meg a méh üreg minden falát, a méhcsövek területét, és a kijáratnál - a nyaki csatornán. On vizsgálat szükséges figyelni, hogy a szín és a méhnyálkahártya vastagsága, annak megfelelő napos ovulációs menstruációs ciklus, alakja és mérete a méh üregében, jelenlétében zárványok és patológiás képződmények, relief falak, az állam a száját a petevezető.

Ha fokális patológiát találunk, az endometriumot a bioszintézis biopszia segítségével végezzük, amely a hiszteroszkóp működési csatornáján keresztül történik. Focális patológia hiányában a teleszkópot eltávolítják a méhtől, és a méh nyálkahártyájának külön diagnosztikai curettage-ját végzik el. A Curettage lehet mechanikus és vákuumos.

A gyenge láthatóság fő oka lehet gázbuborék, vér és elégtelen megvilágítás. Amikor folyékony hiszteroszkópiát használunk, a folyadék-adagoló rendszert szorosan figyelemmel kell kísérni, hogy elkerüljük a sűrített levegő bejutását, és fenntartsuk az optimális folyadékszállítási sebességet a méh üregének a vérből történő mosásához.

Mikrogisteroskopiya

Jelenleg kétféle mikrohiszteroszkóp Hamou - I és II. Ezek jellemzőit a fentiekben ismertetjük.

A mikrohiszteroszkóp I egy eredeti többcélú eszköz. Segítségével lehetőség van a méh nyálkahártyájának makro- és mikroszkópos vizsgálatára is. Makroszkóposan, a nyálkahártyát panorámás nézettel vizsgáljuk, a sejtek mikroszkopikus vizsgálata a sejtek intravitális festése után kontaktmetszettel történik.

Először egy közönséges panoráma vizsgálatot végzünk, különös figyelmet szentelve, ha lehetséges, a cervicalis csatornán keresztüli atraumatikus áthaladásra állandó látásszabályozás mellett.

A hiszteroszkóp fokozatos elősegítésével vizsgálja meg a nyaki csatorna nyálkahártyáját, majd a méh teljes üregét panoráma nézze meg, az endoszkópot forgassa. Ha az endometriumban az atipikus változások gyanúja merül fel, az egyenes szemlencsét az oldalán változtatják, és a méh üreg nyálkahártyájának panorámás vizsgálatát 20-szorosára növelik. Ilyen növekedés esetén lehetségessé válik az endometrium mirigyeinek sűrűségének, valamint a dystrophiás és egyéb változások jelenléte vagy hiánya, az erek helyének jellege. Ugyanezen nagyításnál a nyaki csatorna nyálkahártyájának részletes vizsgálata, különösen a disztális rész (cervikoszkópia) vizsgálata történik. Ezután végezzen mikrolithogetheroscopy.

A méhnyak mikrohisztoszkóppal történő vizsgálatának első szakasza (20-szoros növekedés) - kolposzkópia. Ezután a méhnyakot metilénkék-oldattal kezeljük. A nagyítás 60-szorosára változik, és egy mikroszkópos vizsgálatot végzünk egy egyenes okulárral a méhszövet távoli végének megérintésével. Csavarja be a képet. Ez a növekedés lehetővé teszi számunkra, hogy kivizsgáljuk a sejtszerkezeteket, azonosítsuk az atipikus helyeket. Különös figyelmet fordítanak az átalakítási zónára.

A mikro-kolposzkópia második szakasza a méhnyak 150-szeres növekedésével, a sejtszintű ellenőrzéssel. A vizsgálatot az oldalsó okuláron végezzük, a disztális véget a hámhoz nyomjuk. Ilyen növekedéssel csak kóros területeket vizsgálunk (például a proliferációs zónák).

A mikrokollogópia módszere meglehetősen bonyolult, sok tapasztalatot igényel nem kevésbé hisztoszkóposan, mint a citológia és a szövettan. A kép értékelésének nehézsége az is, hogy a sejtek vizsgálata intravitális festés után történik. A fenti okok miatt az I. Mikrohiszteroszkópot és a mikrokampó-steroszkópiát nem használják széles körben.

A mikrohiszteroszkópot II széles körben használják az operatív hiszteroszkópiában. Ez a modell lehetővé teszi a méh üregének panoráma vizsgálatát nagyítás nélkül, makrohisztoszkópiát 20-szoros növeléssel és mikrohisztoszkópiával 80-szoros nagyítással. Az alkalmazás módja ugyanaz, mint fent. A II mikrohisztoszkóp segítségével a sebészi hiszteroszkópos beavatkozásokat félig merev és merev műtéti endoszkópos műszerekkel végezzük. Ezenkívül ugyanazon teleszkóppal egy resektoszkópot is használnak.

[1], [2], [3], [4], [5], [6], [7], [8]